松材线虫乙醇脱氢酶家族鉴定及功能分析

马奥斯淇,  马倩,  俸宏幸,  郝昕,  张宇,  杨松,  陈洁

马奥斯淇, 马倩, 俸宏幸, 等. 松材线虫乙醇脱氢酶家族鉴定及功能分析 [J]. 环境昆虫学报, 2026, 48(3): 846-855. doi: 10.3969/j.issn.1674-0858.2026.03.19
引用本文: 马奥斯淇, 马倩, 俸宏幸, 等. 松材线虫乙醇脱氢酶家族鉴定及功能分析 [J]. 环境昆虫学报, 2026, 48(3): 846-855. doi: 10.3969/j.issn.1674-0858.2026.03.19
MA Ao-Si-Qi, MA Qian, FENG Hong-Xing, et al. Identification and function analysis of alcohol dehydrogenase family in Bursaphelenchus xylophilus [J]. Journal of Environmental Entomology, 2026, 48(3): 846-855. doi: 10.3969/j.issn.1674-0858.2026.03.19
Citation: MA Ao-Si-Qi, MA Qian, FENG Hong-Xing, et al. Identification and function analysis of alcohol dehydrogenase family in Bursaphelenchus xylophilus [J]. Journal of Environmental Entomology, 2026, 48(3): 846-855. doi: 10.3969/j.issn.1674-0858.2026.03.19

松材线虫乙醇脱氢酶家族鉴定及功能分析

doi: 10.3969/j.issn.1674-0858.2026.03.19
基金项目: 

云南省高原特色农业领域科技计划项目 202302AE090017;

松材线虫病预防与控制技术国家林业和草原局重点实验室开放课题 202501;

西南林业大学林学云南省一流建设项目 LXXK-2024Z04;

云南省科技厅科技计划项目 202401BD070001-115;

云南省高等学校大学生创新创业训练计划项目 S202410677078;

云南省高等学校大学生创新创业训练计划项目 S202410677073

详细信息
    作者简介:

    马奥斯淇,女,四川省绵阳市人,硕士研究生,研究方向为森林病虫害防治,E-mail:masq6277@163.com

    通讯作者 Author for correspondence:

    陈洁,博士,讲师,研究方向为森林灾害预警与控制,E-mail:18704633148@163.com

  • 中图分类号: Q968.1;Q963

    文献标识码: A

    文章编号: 1674-0858(2026)03-0846-10

Identification and function analysis of alcohol dehydrogenase family in Bursaphelenchus xylophilus

  • 摘要:
    目的 

    为了解松材线虫Bursaphelenchus xylophilus乙醇脱氢酶(Alcohol dehydrogenase,ADH)基因家族在松材线虫生长发育过程中起到的作用。

    方法 

    本研究通过秀丽隐杆线虫等已知线虫的ADH基因家族序列与松材线虫ADH基因家族序列数据库的比对,成功鉴定出12个ADH基因。随后对该基因家族的理化性质、染色体分布、蛋白结构和在不同虫态中的表达进行了分析。ADH编码的氨基酸等电点为5.86~9.12。

    结果 

    表达谱分析结果显示,ADH基因家族在卵、雄虫、3龄幼虫、4龄幼虫、滞育态3龄幼虫、扩散态4龄幼虫时期均有高水平表达。

    结论 

    推测该基因家族参与松材线虫的卵发育、正常发育和性别分化等功能,是不可或缺的基因,为松材线虫病的基因靶向防治提供一定的参考。

     

    Abstract:
    Aim 

    To clarify the role of the alcohol dehydrogenase (ADH) gene family in the development and reproduction of Bursaphelenchus xylophilus.

    Methods 

    Through BLAST analyses against Caenorhabditis elegans and other nematodes, we identified 12 ADH genes in the B. xylophilus genome. These genes were retrieved and analyzed for physicochemical properties, chromosomal location, protein structures and stage-specific expression. Predicted isoelectric points ranged from 5.86 to 9.12.

    Results 

    Transcript levels were high in eggs, males, third- and fourth-stage larvae, diapause L3 and dispersal L4, indicating that the family is required for egg development, growth and sexual differentiation.

    Conclusion 

    These data define candidate targets for gene-based control of B. xylophilus.

     

  • 乙醇脱氢酶(Alcohol dehydrogenase,ADH)是一种专一性的含锌金属酶,是生物体内重要的中链脱氢还原酶,它与生物的逆境胁迫应答关系密切,并在诸多生物生理生化过程中发挥着至关重要的作用(Danielsson et al.,1994)。Gemma等人研究发现乙醇脱氢酶能以烟酰胺腺嘌呤二核苷酸为辅酶,催化伯醇和醛间的转化反应,乙醇(CH3CH2OH)被氧化为乙醛(CH3CHO)的同时NAD+被还原为NADH(Gemma et al.,2006),生成的NADH随后可以进入细胞内的电子传递链中参与ATP的生成(Castro et al.,2012)。在细胞质中,ADH将乙醇代谢为乙醛,之后乙醛脱氢酶催化乙醛转化为乙酸(CH3COOH),这一反应也是一个氧化反应,乙醛在此过程中被进一步氧化为乙酸,同时NAD+被还原为NADH(刘威等,2014;Katner et al.,2019)。乙醇脱氢酶有ADH1、ADH2、ADH3等多种亚型,不同亚型在不同的组织和物种中具有不同的酶活性和底物特异性(Alaimo et al.,2012;张乐等,2013)。不同亚型的ADH可能对乙醇和其他底物有不同的亲和力(Yu et al.,2011)。张伟等人发现ADH基因在外源性解毒途径中,通过代谢酒精和其他有毒物质来减少其对细胞的毒害,帮助松材线虫克服宿主防御化学物质并在松树树脂管道中生存(Wang et al.,2019;Zhang et al.,2020)。

    松材线虫病(Pine wilt disease,PWD)是由松材线虫Bursaphelenchus xylophilus寄生在松树体内而导致松树迅速死亡的一种破坏性林木病害。国家林业和草原局2024年第4号公告显示,我国现有18个省(自治区、直辖市)663个县级行政区报道松材线虫疫情,发病地区最北端已至吉林通化市,最西端已达四川雅安市(https://www.forestry.gov.cn/c/www/gkgjlyjgb/547477.jhtml),致死松树数千万株(叶建仁,2019)。松材线虫病疫情扩散迅速、为害面积广,与松材线虫解毒、逆境调控和生长发育等相关基因有密不可分的关系。在前人研究中,ADH基因家族在线虫的逆境调控中发挥重要作用(Futai,2013;Patananan et al.,2015;Albrecht et al.,2022;Cao et al.,2023)。本研究旨在鉴定松材线虫的ADH基因家族,并分析其基因结构、保守结构域、系统发育树以及在松材线虫不同虫态中的表达模式,为松材线虫基因家族的功能研究奠定理论基础。

    在通过NCBI蛋白数据库(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/protein/)中查询并下载秀丽隐杆线虫Caenorhabditis elegans的ADH蛋白序列,再在数据库中下载获取最新松材线虫全基因组数据(Chelliah et al.,2023)。经本地BlastX比对后获得松材线虫ADH蛋白潜在序列(曹景鑫,2022)。随后在InterPro数据库(https://www.ebi.ac.uk/interpro/)查询并下载ADH所具有的保守结构ADH_zinc_N(PF00107)的隐马尔可夫模型,使用Hmmer 3.0软件在松材线虫蛋白数据库中检索包含上述两个结构域的候选蛋白序列(Zhao et al.,2024)。在NCBI保守域数据库(CD-Search,http://www.ncbi.nlm.nih.gov/Structure/cdd/wrpsb.cgi)和InterPro数据库分析筛选出的蛋白具有ADH_zinc_N保守结构域,经过去除冗余的序列,最终确定了12个BxADH家族潜在蛋白成员(Cao et al.,2023)。

    使用MEGA 11.0将松材线虫ADH基因家族的蛋白序列与异交线虫Caenorhabditis nigoni、远交线虫Caenorhabditis remanei、布里格氏隐杆线虫Caenorhabditis briggsae、Pristionchus fissidentatus、水稻干尖线虫Aphelenchoides besseyi等其它线虫的ADH蛋白序列进行多序列比对,之后基于邻接法构建进化树,自检值设置为1 000次(Seung-Hae et al.,2014)。

    Expasy平台(https://www.expasy.org/)提供了对蛋白质理化性质的分析工具,这些可以帮助研究人员了解蛋白质的基本物理和化学性质,这对于蛋白质的功能研究具有意义(梁文凯等,2024)。通过ProtParam对松材线虫ADH蛋白家族的氨基酸组成、分子量、等电点、和脂肪系数等信息进行整理(Martins et al.,2020)。

    基于MEGA 11.0对12个松材线虫ADH蛋白序列进行多序列比对,构建最大似然树,自检值设置为1 000次(Diao et al.,2021;吴怡蓓等,2023)。根据MEME(http://meme-suite.org/)工具对松材线虫ADH蛋白的保守基序分布情况进行整理,将结果与最大似然树结合,绘制标有保守基序结构的基因结构图(武映宏等,2022)。

    本研究通过对松材线虫基因注释文件进行筛选获取到包括它们在染色体上的位置与距离、起始终止位点及基因长度等信息(谭瑞娜等,2023),利用这些获得ADH基因的注释信息,结合TBtools工具,即绘制出12个Bxadh基因在松材线虫染色体上的分布密度图(Cao et al.,2023)。为了满足进一步了解和分析松材线虫ADH家族蛋白的特性的需求,使用Prabi和Protter等在线工具对其二级结构进行分析(刘艳丽等,2019)。之后在Swiss-Model(https://swissmodel.expasy.org/interactive)上对松材线虫ADH基因进行蛋白三级结构预测分析(Diao et al.,2021)。

    为深入了解松材线虫ADH家族蛋白在生长发育过程中的具体作用,本研究结合松材线虫ADH基因家族在不同虫态的转录组数据(NCBI编号:PRJDB7519和PRJDB3458),获取了12个松材线虫ADH基因家族成员在不同虫态的表达值(FPKMs)(武映宏等,2022)。随后,利用OmicStudio Tools的Heatmap Plots工具(https://www.omicstudio.cn)对转录组中的ADH家族表达数据进行标准化处理,并绘制表达模式图(Duan et al.,2022)。

    通过对松材线虫ADH基因家族进行Wormbase数据库BLASTX检索比对和保守结构域预测,获得12个ADH基因家族成员,将其命名为BxADH1 ~BxADH12(表 1)。

    表  1  松材线虫ADH基因家族蛋白与其他线虫ADH基因家族蛋白对照表
    Table  1  Comparison of BxADH with other nematode ADH
    松材线虫编号
    ID of B. xylophilus
    蛋白名称
    Protein name
    同源线虫蛋白编号
    ID in other nematodes
    序列编号
    ID of sequence
    相似分数
    Scores of similarities
    相似度E值
    Similarity E-value
    BXYJ5.010217500 BxADH1 B9Z55_002719 PIC52736.1 310 3×10-102
    BXYJ5.020067200 BxADH2 GCK72_009194 XP_003103212.2 291 4×10-95
    BXYJ5.020188500 BxADH3 CRE_26702 EFP04270.1 387 1×10-113
    BXYJ5.020189500 BxADH4 GCK72_018131 XP_053581321.1 387 1×10-132
    BXYJ5.020198300 BxADH5 GCK72_018130 XP_003114286.2 366 1×10-124
    BXYJ5.020227000 BxADH6 L3Y34_007935 ULT89101.1 354 1×10-119
    BXYJ5.020239100 BxADH7 CRE_27340 EFP05661.1 348 2×10-117
    BXYJ5.020239300 BxADH8 CRE_27340 EFP05661.1 315 3×10-103
    BXYJ5.040256100 BxADH9 LOAG_08522 XP_003144101.1 597 0
    BXYJ5.050120600 BxADH10 PFISCL1PPCAC_1956 GMT10659.1 623 0
    BXYJ5.050206800 BxADH11 M3Y94_00108500 KAI6213089.1 449 2×10-157
    BXYJ5.050211700 BxADH12 M3Y94_00108500 KAI6213089.1 435 1×10-150
    注:PIC,异交线虫ADH蛋白;XP、EFP,远交线虫ADH蛋白;ULT,布里格氏隐杆线虫ADH蛋白;GMT,Pristionchus fissidentatus ADH蛋白;KAI,水稻干尖线虫ADH蛋白。Note:PIC, ADH of Caenorhabditis nigoni; XP, EFP, ADH of Caenorhabditis remanei; ULT, ADH of Caenorhabditis briggsae; GMT, ADH of Pristionchus fissidentatus; KAI, ADH of Aphelenchoides besseyi.

    基因家族理化性质分析结果表明,BxADH蛋白氨基酸组成个数平均为381.25个,其中BxADH8的氨基酸数量最多,为453个氨基酸。分子量在37.63~49.44 kDa之间。等电点在5.86~9.12范围内。12个BxADHs中,BxADH2、BxADH3、BxADH4、BxADH7和BxADH8均为亲水蛋白,其余为疏水蛋白,除BxADH1为不稳定蛋白,其余均为稳定蛋白(表 2)。

    表  2  松材线虫ADH基因家族蛋白的理化性质分析
    Table  2  Analysis of physicochemical properties of ADH protein in Bursaphelenchus xylophilus
    蛋白名称
    Protein name
    氨基酸数(个)
    Number of amino acids
    分子量(kDa)
    Molecular weight
    等电点
    Isoelectric point
    脂肪系数
    Aliphatic index
    亲水系数
    Hydrophilicity
    分子式
    Formula
    原子数(个)
    Number of atoms
    不稳定系数
    Instability index
    稳定性
    Stability
    BxADH1 352 38.93 7.70 88.64 -0.150 C1743H2736N480O506S13 5478 42.79 不稳定
    Unstable
    BxADH2 352 37.22 7.60 98.35 0.166 C1656H2669N451O490S15 5281 19.69 稳定
    Stable
    BxADH3 422 45.39 8.87 95.43 0.016 C2025H3255N565O587S15 6447 31.09 稳定
    Stable
    BxADH4 350 37.58 6.98 95.00 0.123 C1673H2696N448O489S21 5327 30.14 稳定
    Stable
    BxADH5 358 38.96 8.28 89.83 -0.030 C1735H2757N475O503S20 5490 27.92 稳定
    Stable
    BxADH6 382 41.46 8.51 96.68 -0.004 C1855H2980N508O532S17 5892 34.61 稳定
    Stable
    BxADH7 350 37.63 7.09 98.89 0.016 C1680H2682N460O499S10 5331 26.23 稳定
    Stable
    BxADH8 453 49.44 9.12 100.31 0.057 C2209H3557N619O628S19 7032 22.79 稳定
    Stable
    BxADH9 396 43.25 5.86 95.93 -0.040 C1939H3084N520O568S15 6126 36.27 稳定
    Stable
    BxADH10 380 41.01 7.05 83.34 -0.123 C1835H2895N487O543S17 5777 22.15 稳定
    Stable
    BxADH11 352 38.36 8.27 93.61 -0.012 C1713H2737N475O485S19 5429 24.20 稳定
    Stable
    BxADH12 428 46.54 7.63 92.38 -0.038 C2057H3294N578O609S21 6559 27.77 稳定
    Stable

    使用MEGA 11.0软件将松材线虫ADH基因蛋白进行多序列比对,并与秀丽隐杆线虫、鼠圆线虫Strongyloides ratti等已知的ADH基因家族的蛋白序列进行多序列对比,使用最大似然法构建系统进化树(图 1)。

    图  1  松材线虫ADH基因家族与其他线虫ADH基因家族蛋白进化树的构建
    注:Bx,松材线虫;Ce,秀丽隐杆线虫;SRAE,鼠圆线虫。
    Fig.  1  Construction of BxADH and other nematode protein evolutionary trees
    Note: Bx, Bursaphelenchus xylophilus; Ce, Caenorhabditis elegans; SRAE, Strongyloides ratti.
    下载: 全尺寸图片

    基因结构分析显示,松材线虫ADH家族外显子个数为3~7个。通过分析系统进化树的结果发现亲缘关系较近的基因在基因结构上具有相似性,如BxADH2、BxADH3、BxADH4皆有3个外显子(图 2)。

    图  2  松材线虫ADH家族基因结构及保守基序分析
    注:比例尺为松材线虫ADH基因长度(bp)。
    Fig.  2  Structure and conserved motif of BxADHs in Bursaphelenchus xylophilus
    Note: Scale bars represented the length of Bxadhs (bp).
    下载: 全尺寸图片

    MEME共检索到12个BxADH共包含有8个Motif,将它们命名为Motif 1~Motif 8,相同Motif在不同成员上排列顺序基本一致。除BxADH1、BxADH9和BxADH10外,其余成员均含有Motif 1~Motif 8,所有成员均含有Motif 3。通过NCBI-CDD进一步分析发现除Motif 3外,Motif 1~Motif 8均为MDR超家族,Motif 3为AdhP超家族,Motif结果进一步证实它们均属于松材线虫ADH基因家族。

    据染色体分布情况表明,12条Bx-adhs基因位于松材线虫的4条染色体上(图 3)。其中Bxadh1位于1号染色体下部;Bxadh2位于2号染色体的中上部,Bxadh3、Bxadh4和Bxadh5位于2号染色体的中下部,Bxadh6、Bxadh7和Bxadh8位于2号染色体的下部;Bxadh9单独位于4号条染色体的下部,Bxadh10位于4号染色体的中部,Bxadh11和Bxadh12位于5号染色体的中下部。共有7个Bxadhs分布在3号染色体上,分布较为集中。通过Expasy提供的在线SOPMA程序对蛋白进行二级结构分析得出(表 3),12个ADH蛋白主要以α–螺旋、β–折叠、β–转角和无规则卷曲为主。拓扑异构分析发现,12个ADH蛋白均为胞内蛋白(图 4)。蛋白三级结构预测分析发现(图 5),BxADH2、BxADH3、BxADH4、BxADH5、BxADH6、BxADH7、BxADH9、BxADH12结构类似,具有口袋结构,可能参与异源物质的共轭,维持线虫体内稳态,这与王林松等人的研究类似(Wang et al.,2024)。

    图  3  松材线虫ADH家族基因的染色体定位
    注:比例尺为松材线虫染色体碱基数量(bp)。
    Fig.  3  Chromosomal position of BxADHs in Bursaphelenchus xylophilus
    Note: Scale bars represented the number of chromosome bases of B. xylophilus (bp).
    下载: 全尺寸图片
    表  3  松材线虫ADH基因家族蛋白结构分析
    Table  3  Structural analysis of BxADHs in Bursaphelenchus xylophilus
    蛋白编号
    Protein ID
    N-糖基化位点
    Number of N-glycosylation sites
    苏氨酸
    Threonine
    丝氨酸
    Serine
    酪氨酸
    Tyrosine
    α-螺旋残基
    α-helix
    比值(%)
    Percentage
    β-折叠残基
    β-fold
    比值(%)
    Percentage
    β-转角残基
    β-turn
    比值(%)
    Percentage
    无规卷曲残基
    Random coil
    比值(%)
    Percentage
    BxADH1 0 13 12 6 126 35.80 72 20.45 28 7.39 126 35.80
    BxADH2 1 13 8 4 90 25.57 81 23.01 39 11.08 142 40.34
    BxADH3 2 16 12 4 102 24.17 92 21.80 44 10.43 184 43.60
    BxADH4 1 13 7 3 101 28.86 77 22.00 31 8.86 141 40.29
    BxADH5 2 12 10 3 103 28.77 82 22.91 36 10.06 137 38.27
    BxADH6 3 8 14 2 109 28.53 82 21.47 33 8.64 158 41.36
    BxADH7 2 10 10 5 96 27.43 76 21.71 33 9.43 145 41.43
    BxADH8 4 14 14 2 149 32.89 94 20.75 36 7.95 174 38.41
    BxADH9 2 5 21 1 115 29.04 72 18.18 24 6.06 185 46.72
    BxADH10 1 7 12 5 96 25.26 86 22.63 33 8.68 165 43.42
    BxADH11 0 15 12 6 93 26.42 78 22.16 27 7.67 154 43.75
    BxADH12 2 7 6 2 94 26.70 83 19.39 29 6.78 200 46.73
    图  4  松材线虫ADH基因家族蛋白的拓朴结构分析
    Fig.  4  Topological analysis of BxADHs in Bursaphelenchus xylophilus
    下载: 全尺寸图片
    图  5  松材线虫ADH基因家族蛋白三维结构预测
    Fig.  5  Three-dimensional structure of BxADHs in Bursaphelenchus xylophilus
    下载: 全尺寸图片

    经过计算RPKM值,获取了ADH基因家族成员在松材线虫不同虫态下的表达量,并利用TBtools绘制热图,可得到12个Bxadh基因在松材线虫不同虫体中的表达谱(图 6)。分析表达谱可知,Bxadh4在松材线虫的卵中表达尤为显著,推测其在卵发育过程中起到一定作用;Bxadh3和Bxadh7在3龄幼虫(L3)时期表达较显著,Bxadh2、Bxadh3、Bxadh7和Bxadh8在4龄幼虫(L4)时期表达较明显,推测他们可能与正常发育过程有关;Bxadh5在松材线虫雄虫的时期表达显著,说明它可能影响着松材线虫的性别分化,尤其影响着雄虫形成;在滞育态3龄幼虫(D3)时期,Bxadh6和Bxadh12的表达较为明显;Bxadh6、Bxadh10和Bxadh11在扩散态4龄幼虫(D4)时期中表达较显著。

    图  6  ADH基因家族在松材线虫不同虫态虫卵中的表达
    注:Egg,卵期;L2,2龄幼虫;L3,3龄幼虫;L4,4龄幼虫;D3,滞育态3龄幼虫;D4,扩散态4龄幼虫;Male,雄成虫;Female,雌成虫。
    Fig.  6  Expression pattern of Bxadhs in different ages of Bursaphelenchus xylophilus
    Note: Egg, Egg stage; L2, 2nd instar larva; L3, 3rd instar larva; L4, 4th instar larva; D3, Diapause 3rd instar larva; D4, Dispersal 4th instar larva; Male, Male adult; Female, Female adult.
    下载: 全尺寸图片

    松材线虫病是一种危害性很强的植物病害,其致病性与松材线虫的传播有着密切的关系。来自不同地区所分离的松材线虫对松树的破坏能力也各不相同,这可能是松材线虫体内的某些基因家族变异所致(Mota et al.,2006;Palomares-Rius et al.,2015)。基因家族是由一个基因通过基因重复而产生两个或更多的拷贝而构成的一组基因,各自具有不同的表达调控模式(Li et al.,2025)。王林松等人发现了一个来源于松材线虫的编码ADH的adh-1基因,通过对adh-1基因进行RNA干扰和福美吡唑试验的结果表明,adh-1参与了松材线虫对乙醇的耐受,并与松材线虫的繁殖有关,表明乙醇可能通过ADH参与调节松材线虫的增殖(Wang et al.,2019)。在随后的几年里,王林松等人选择松材线虫ADH基因家族作为福美吡唑选择性抑制剂的药物靶标,发现ADH基因家族的表达调控经过药物抑制对松材线虫的卵孵化率、发育、排卵和寿命有很大的负面影响,这表明ADH基因可能是控制PWN的潜在药物靶标(Wang et al.,2024)。张伟等人也发现松材线虫ADH基因家族在异生物解毒途径中为了适应新环境时,出现了基因扩增,促进了其在松树树脂管道中的生存,更好的解释了基因家族在进化过程中发挥着重要作用(Zhang et al.,2020)。

    ADH基因同时也广泛存在于各种物种中,包括原核生物、真菌、植物和动物(Zhang et al.,2015)。同时ADH基因在种群生物学和进化遗传学原理发展过程中也起着重要的作用(Strommer et al.,2011)。有研究表明,ADH参与多种生物的异物代谢过程,为维持生物内环境稳定作出了重要的贡献(Wang et al.,2024)。ADH2在维持球孢白僵菌Beauveria bassiana和金龟子绿僵菌Metarhizium anisopliae的分生孢子与昆虫角质层的黏附、毒力和昆虫致病中发挥重要作用(Zhou et al.,2021)。此外,ADH还参与介导了秀丽隐杆线虫的抗衰老反应,ADH在多株长寿秀丽隐杆线虫中上调表达,并且是长寿表型所必须的(Ghaddar et al.,2023)。ADH还参与了多种植物的各种胁迫耐受反应、脂质代谢和发育相关功能。ADH在植物中是一个小的基因家族,在植物抵抗涝害、冷害、干旱等胁迫环境中起着非常重要的作用。同时,在哺乳动物中,乙醇通过不同的氧化和非氧化酶系统代谢氧化途径主要负责乙醇的清除,流体控制分析表明在哺乳动物中依赖型乙醇脱氢酶(Zn-ADHs),即中链脱氢酶,是调节乙醇氧化速率的主要酶(Yao et al.,2010)。部分ADH基因在松材线虫卵期、4龄虫期表达明显上调。本研究推测部分Bx-adhs可能参与松材线虫的卵孵化、成虫分化和雄虫的发育。结合前人的研究基因家族的结果,可以更好地理解基因的进化历史和功能多样性。本研究将为松材线虫在宿主松树中的定殖和防控技术的开发与应用提供重要的理论资料。

    本研究基于生物信息学方法,成功鉴定出了12个松材线虫ADH家族成员。对松材线虫ADH蛋白的理化性质分析后发现,基因编码的氨基酸数量差异不大,在350~453个之间,分子量在37.63~49.44 kDa之间,Bxadh2、Bxadh3、Bxadh4、Bxadh11和Bxadh12均含有3个外显子,Bxadh集中分布在松材线虫第三条染色体上。对松材线虫Motif分析发现,所有松材线虫ADH基因家族成员均含有Motif 3。通过分析ADH基因家族成员在松材线虫不同虫态虫卵中的表达量能够发现,ADH基因参与了松材线虫的卵孵化、幼虫发育和雄虫性别分化等过程,并起到了重要作用。分析松材线虫ADH基因家族的序列和蛋白结构等信息,可在预测和识别松材线虫ADH蛋白中发挥作用的方面,分析结果表明ADH基因家族在松材线虫的卵发育、正常发育及雄虫的形成环节中都起到了不可替代的作用,为研究ADH基因家族的生理生化功能建立基础。但乙醇脱氢酶在松材线虫中所起到的具体生物学功能还需要进一步的验证。

  • 图  1   松材线虫ADH基因家族与其他线虫ADH基因家族蛋白进化树的构建

    注:Bx,松材线虫;Ce,秀丽隐杆线虫;SRAE,鼠圆线虫。

    Fig.  1   Construction of BxADH and other nematode protein evolutionary trees

    Note: Bx, Bursaphelenchus xylophilus; Ce, Caenorhabditis elegans; SRAE, Strongyloides ratti.

    下载: 全尺寸图片

    图  2   松材线虫ADH家族基因结构及保守基序分析

    注:比例尺为松材线虫ADH基因长度(bp)。

    Fig.  2   Structure and conserved motif of BxADHs in Bursaphelenchus xylophilus

    Note: Scale bars represented the length of Bxadhs (bp).

    下载: 全尺寸图片

    图  3   松材线虫ADH家族基因的染色体定位

    注:比例尺为松材线虫染色体碱基数量(bp)。

    Fig.  3   Chromosomal position of BxADHs in Bursaphelenchus xylophilus

    Note: Scale bars represented the number of chromosome bases of B. xylophilus (bp).

    下载: 全尺寸图片

    图  4   松材线虫ADH基因家族蛋白的拓朴结构分析

    Fig.  4   Topological analysis of BxADHs in Bursaphelenchus xylophilus

    下载: 全尺寸图片

    图  5   松材线虫ADH基因家族蛋白三维结构预测

    Fig.  5   Three-dimensional structure of BxADHs in Bursaphelenchus xylophilus

    下载: 全尺寸图片

    图  6   ADH基因家族在松材线虫不同虫态虫卵中的表达

    注:Egg,卵期;L2,2龄幼虫;L3,3龄幼虫;L4,4龄幼虫;D3,滞育态3龄幼虫;D4,扩散态4龄幼虫;Male,雄成虫;Female,雌成虫。

    Fig.  6   Expression pattern of Bxadhs in different ages of Bursaphelenchus xylophilus

    Note: Egg, Egg stage; L2, 2nd instar larva; L3, 3rd instar larva; L4, 4th instar larva; D3, Diapause 3rd instar larva; D4, Dispersal 4th instar larva; Male, Male adult; Female, Female adult.

    下载: 全尺寸图片

    表  1   松材线虫ADH基因家族蛋白与其他线虫ADH基因家族蛋白对照表

    Table  1   Comparison of BxADH with other nematode ADH

    松材线虫编号
    ID of B. xylophilus
    蛋白名称
    Protein name
    同源线虫蛋白编号
    ID in other nematodes
    序列编号
    ID of sequence
    相似分数
    Scores of similarities
    相似度E值
    Similarity E-value
    BXYJ5.010217500 BxADH1 B9Z55_002719 PIC52736.1 310 3×10-102
    BXYJ5.020067200 BxADH2 GCK72_009194 XP_003103212.2 291 4×10-95
    BXYJ5.020188500 BxADH3 CRE_26702 EFP04270.1 387 1×10-113
    BXYJ5.020189500 BxADH4 GCK72_018131 XP_053581321.1 387 1×10-132
    BXYJ5.020198300 BxADH5 GCK72_018130 XP_003114286.2 366 1×10-124
    BXYJ5.020227000 BxADH6 L3Y34_007935 ULT89101.1 354 1×10-119
    BXYJ5.020239100 BxADH7 CRE_27340 EFP05661.1 348 2×10-117
    BXYJ5.020239300 BxADH8 CRE_27340 EFP05661.1 315 3×10-103
    BXYJ5.040256100 BxADH9 LOAG_08522 XP_003144101.1 597 0
    BXYJ5.050120600 BxADH10 PFISCL1PPCAC_1956 GMT10659.1 623 0
    BXYJ5.050206800 BxADH11 M3Y94_00108500 KAI6213089.1 449 2×10-157
    BXYJ5.050211700 BxADH12 M3Y94_00108500 KAI6213089.1 435 1×10-150
    注:PIC,异交线虫ADH蛋白;XP、EFP,远交线虫ADH蛋白;ULT,布里格氏隐杆线虫ADH蛋白;GMT,Pristionchus fissidentatus ADH蛋白;KAI,水稻干尖线虫ADH蛋白。Note:PIC, ADH of Caenorhabditis nigoni; XP, EFP, ADH of Caenorhabditis remanei; ULT, ADH of Caenorhabditis briggsae; GMT, ADH of Pristionchus fissidentatus; KAI, ADH of Aphelenchoides besseyi.

    表  2   松材线虫ADH基因家族蛋白的理化性质分析

    Table  2   Analysis of physicochemical properties of ADH protein in Bursaphelenchus xylophilus

    蛋白名称
    Protein name
    氨基酸数(个)
    Number of amino acids
    分子量(kDa)
    Molecular weight
    等电点
    Isoelectric point
    脂肪系数
    Aliphatic index
    亲水系数
    Hydrophilicity
    分子式
    Formula
    原子数(个)
    Number of atoms
    不稳定系数
    Instability index
    稳定性
    Stability
    BxADH1 352 38.93 7.70 88.64 -0.150 C1743H2736N480O506S13 5478 42.79 不稳定
    Unstable
    BxADH2 352 37.22 7.60 98.35 0.166 C1656H2669N451O490S15 5281 19.69 稳定
    Stable
    BxADH3 422 45.39 8.87 95.43 0.016 C2025H3255N565O587S15 6447 31.09 稳定
    Stable
    BxADH4 350 37.58 6.98 95.00 0.123 C1673H2696N448O489S21 5327 30.14 稳定
    Stable
    BxADH5 358 38.96 8.28 89.83 -0.030 C1735H2757N475O503S20 5490 27.92 稳定
    Stable
    BxADH6 382 41.46 8.51 96.68 -0.004 C1855H2980N508O532S17 5892 34.61 稳定
    Stable
    BxADH7 350 37.63 7.09 98.89 0.016 C1680H2682N460O499S10 5331 26.23 稳定
    Stable
    BxADH8 453 49.44 9.12 100.31 0.057 C2209H3557N619O628S19 7032 22.79 稳定
    Stable
    BxADH9 396 43.25 5.86 95.93 -0.040 C1939H3084N520O568S15 6126 36.27 稳定
    Stable
    BxADH10 380 41.01 7.05 83.34 -0.123 C1835H2895N487O543S17 5777 22.15 稳定
    Stable
    BxADH11 352 38.36 8.27 93.61 -0.012 C1713H2737N475O485S19 5429 24.20 稳定
    Stable
    BxADH12 428 46.54 7.63 92.38 -0.038 C2057H3294N578O609S21 6559 27.77 稳定
    Stable

    表  3   松材线虫ADH基因家族蛋白结构分析

    Table  3   Structural analysis of BxADHs in Bursaphelenchus xylophilus

    蛋白编号
    Protein ID
    N-糖基化位点
    Number of N-glycosylation sites
    苏氨酸
    Threonine
    丝氨酸
    Serine
    酪氨酸
    Tyrosine
    α-螺旋残基
    α-helix
    比值(%)
    Percentage
    β-折叠残基
    β-fold
    比值(%)
    Percentage
    β-转角残基
    β-turn
    比值(%)
    Percentage
    无规卷曲残基
    Random coil
    比值(%)
    Percentage
    BxADH1 0 13 12 6 126 35.80 72 20.45 28 7.39 126 35.80
    BxADH2 1 13 8 4 90 25.57 81 23.01 39 11.08 142 40.34
    BxADH3 2 16 12 4 102 24.17 92 21.80 44 10.43 184 43.60
    BxADH4 1 13 7 3 101 28.86 77 22.00 31 8.86 141 40.29
    BxADH5 2 12 10 3 103 28.77 82 22.91 36 10.06 137 38.27
    BxADH6 3 8 14 2 109 28.53 82 21.47 33 8.64 158 41.36
    BxADH7 2 10 10 5 96 27.43 76 21.71 33 9.43 145 41.43
    BxADH8 4 14 14 2 149 32.89 94 20.75 36 7.95 174 38.41
    BxADH9 2 5 21 1 115 29.04 72 18.18 24 6.06 185 46.72
    BxADH10 1 7 12 5 96 25.26 86 22.63 33 8.68 165 43.42
    BxADH11 0 15 12 6 93 26.42 78 22.16 27 7.67 154 43.75
    BxADH12 2 7 6 2 94 26.70 83 19.39 29 6.78 200 46.73
  • Albrecht PA, Fernandez-Hubeid LE, Deza-Ponzio R, et al. Reduced acute functional tolerance and enhanced preference for ethanol in exposed to lead during development: potential role of alcohol dehydrogenase [J]. Neurotoxicology and Teratology, 2022, 94: 107131. doi: 10.1016/j.ntt.2022.107131
    Cao JX, Hao X, Li Y, et al. Exploring the role of detoxification genes in the resistance of Bursaphelenchus xylophilus to different exogenous nematicidal substances using transcriptomic analyses [J]. Pesticide Biochemistry and Physiology, 2023, 194: 105527. doi: 10.1016/j.pestbp.2023.105527
    曹景鑫. 松材线虫UDP—葡萄糖醛酸转移酶基因功能分析[D]. 哈尔滨: 东北林业大学硕士学位论文, 2022

    Cao JX. Functional Analysis of UDP-glucuronyltransferase Gene in Bursaphelenchus xylophilus[D]. Harbin: Northeast Forestry University Master Thesis, 2002.
    Castro PV, Shilpi K, Young BD, et al. Caenorhabditis elegans battling starvation stress: low levels of ethanol prolong lifespan in L1 larvae [J]. PLoS ONE, 2012, 7(1): e29984. doi: 10.1371/journal.pone.0029984
    Chelliah A, Arumugam C, Suthanthiram B, et al. Genome-wide identification, characterization, and evolutionary analysis of NBS genes and their association with disease resistance in Musa spp. [J]. Functional & Integrative Genomics, 2023, 23(1): 7.
    Danielsson O, Atrian S, Luque T, et al. Fundamental molecular differences between alcohol dehydrogenase classes [J]. Proceedings of the National Academy of Sciences, 1994, 91(11): 4980-4984. doi: 10.1073/pnas.91.11.4980
    Diao J, Hao X, Ma W, et al. Bioinformatics analysis of structure and function in the MRP gene family and its expression in response to various drugs in Bursaphelenchus xylophilus [J]. Journal of Forestry Research, 2021, 32(2): 779-787. doi: 10.1007/s11676-019-01086-6
    Duan PP, Wei M, Zhang R, et al. Identification and bioinformatic analysis of the family members and the expression of the in the flower buds of CMS/Rf system in pepper [J]. Functional & Integrative Genomics, 2022, 22(6): 1411-1431.
    Espada M, Silva AC, Eves van den Akker S, et al. Identification and characterization of parasitism genes from the pinewood nematode Bursaphelenchus xylophilus reveals a multilayered detoxification strategy [J]. Molecular Plant Pathology, 2016, 17(2): 286-295. doi: 10.1111/mpp.12280
    Futai K. Pine wood nematode, Bursaphelenchus xylophilus [J]. Annual Review of Phytopathology, 2013, 51(1): 61-83. doi: 10.1146/annurev-phyto-081211-172910
    Gemma S, Vichi S, Testai E. Individual susceptibility and alcohol effects: biochemical and genetic aspects [J]. Annali dell'Istituto Superiore di Sanita, 2006, 42(1): 8-16.
    Ghaddar A, Mony VK, Mishra S, et al. Increased alcohol dehydrogenase 1 activity promotes longevity [J]. Current Biology, 2023, 33(6): 1036-1046. doi: 10.1016/j.cub.2023.01.059
    Katner SN, Bredhold KE, Steagall KB, et al. Caenorhabditis elegans as a model system to identify therapeutics for alcohol use disorders [J]. Behavioural Brain Research, 2019, 365: 7-16. doi: 10.1016/j.bbr.2019.02.015
    Li Y, Wang R, Yu L, et al. Unraveling a growth-promoting potential for plants: genome-wide identification and expression state of the TCP gene family in Juglans mandshurica [J]. Scientia Horticulturae, 2025, 339: 113852. doi: 10.1016/j.scienta.2024.113852
    梁文凯, 刘莎, 王玉琴, 等. 蠋蝽丝氨酸蛋白酶抑制剂基因鉴定及其表达特征分析[J]. 环境昆虫学报, 2024, 46(3): 641-649

    Liang WK, Liu S, Wang YQ, et al. Identification and expression profiling of serine protease inhibitor genes in Arma custos[J]. Journal of Environmental Entomology, 2024, 46(3): 641-649.
    梁燕, 严建萍, 谭湘陵. 通育粳1号水稻乙醇脱氢酶基因克隆与原核表达[J]. 生物技术通报, 2011, 3: 94-96

    Liang Y, Yan JP, Tan XL. Cloning and prokaryotic expression of ADH in E. coli from rice of No. 1 Tongyujing[J]. Biotechnology Bulletin, 2011, 3: 94-96.
    刘威, 陈昊, 靳亚忠, 等. 高等植物醇脱氢酶及其基因家族研究进展[J]. 植物生理学报, 2014, 50: 1479-1493

    Liu W, Chen H, Jin YZ, et al. Advances in alcohol dehydrogenase enzymes and their gene families in higher plants[J]. Plant Physiology Journal, 2014, 50: 1479-1493.
    刘艳丽, 马林龙, 曹丹, 等. 茶树果胶乙酰酯酶家族成员的鉴定和生物信息学分析[J]. 茶叶科学, 2019, 39(5): 521-529

    Liu YL, Ma LL, Cao D, et al. Identification and bioinformatic analysis of pectin acetylesterases from tea plant[J]. Journal of Tea Science, 2019, 39(5): 521-529.
    Martins ACQ, Mehta A, Murad AM, et al. Proteomics unravels new candidate genes for Meloidogyne resistance in wild Arachis [J]. Journal of Proteomics, 2020, 217: 103690. doi: 10.1016/j.jprot.2020.103690
    Mota MM, Takemoto S, Takeuchi Y, et al. Comparative studies between Portuguese and Japanese isolates of the pinewood nematode, Bursaphelenchus xylophilus [J]. Journal of Nematology, 2006, 38(4): 429.
    Palomares-Rius JE, Tsai IJ, Karim N, et al. Genome-wide variation in the pinewood nematode Bursaphelenchus xylophilus and its relationship with pathogenic traits [J]. BMC Genomics, 2015, 16: 1-13.
    Patananan AN, Budenholzer LM, Eskin A, et al. Ethanol-induced differential gene expression and acetyl-CoA metabolism in a longevity model of the nematode Caenorhabditis elegans [J]. Experimental Gerontology, 2015, 61: 20-30. doi: 10.1016/j.exger.2014.11.010
    Seung HK, Kyu PO, Shuyi N, et al. Bioinformatic analysis of nematode migration-associated genes identifies novel vertebrate neural crest markers [J]. PLoS ONE, 2014, 9(7): e103024. doi: 10.1371/journal.pone.0103024
    Strommer J. The plant ADH gene family [J]. The Plant Journal, 2011, 66(1): 128-142. doi: 10.1111/j.1365-313X.2010.04458.x
    谭瑞娜, 郝昕, 理永霞, 等. 松材线虫USP基因家族鉴定及生物信息学分析[J]. 东北林业大学学报, 2023, 51: 120-126, 131

    Tan RN, Hao X, Li YX, et al. Identification and bioinformatic analysis of USP gene family in Bursaphelenchus xylophilus[J]. Journal of Northeast Forestry University, 2023, 51: 120-126, 131.
    Wang L, Zhang T, Pan Z, et al. The alcohol dehydrogenase with a broad range of substrate specificity regulates vitality and reproduction of the plant-parasitic nematode Bursaphelenchus xylophilus [J]. Parasitology, 2019, 146(4): 497-505. doi: 10.1017/S0031182018001695
    Wang LS, Qin CL, Guo QQ, et al. Transcriptome study of Bursaphelenchus xylophilus treated with fomepizole reveals a serine/threonine-protein phosphatase gene that is substantially linked with vitality and pathogenicity [J]. Parasitology, 2024, 114(3): 630-640.
    Wang RQ, Du CF, Gu G, et al. Genome-wide identification and expression analysis of the ADH gene family under diverse stresses in tobacco (Nicotiana tabacum L.) [J]. BMC Genomics, 2024, 25(1): 13. doi: 10.1186/s12864-023-09813-4
    吴怡蓓, 夏鹏亮, 张廷伟, 等. 烟草甲细胞色素P450还原酶基因的分子特征与表达模式分析[J]. 环境昆虫学报, 2023, 45(1): 124-132

    Wu YB, Xia PL, Zhang TW, et al. Molecular characterization and expression profiles of a cytochrome P450 reductase gene in Lasioderma serricorne (Coleoptera: Anobiidae)[J]. Journal of Environmental Entomology, 2023, 45(1): 124-132.
    武映宏, 黄东益, 王永, 等. 椰子ALDH基因家族的鉴定及生物信息学分析[J]. 热带生物学报, 2022, 13(6): 541-549

    Wu YH, Huang DY, Wang Y, et al. Identification and bioinformatics analysis of the ALDH gene family in coconut[J]. Journal of Tropical Biology, 2022, 13(6): 541-549.
    Yao CT, Lai CL, Hsieh HS, et al. Establishment of steady-state metabolism of ethanol in perfused rat liver: the quantitative analysis using kinetic mechanism-based rate equations of alcohol dehydrogenase [J]. Alcohol, 2010, 44(6): 541-551. doi: 10.1016/j.alcohol.2010.07.002
    叶建仁. 松材线虫病在中国的流行现状、防治技术与对策分析[J]. 林业科学, 2019, 55(9): 1-10

    Ye JR. Epidemic status of pine wilt disease in China and its prevention and control techniques and counter measures[J]. Scientia Silvae Sinicae, 2019, 55(9): 1-10.
    Yu X, Zhao W, Ma J, et al. Beneficial and harmful effects of alcohol exposure on Caenorhabditis elegans worms [J]. Biochemical and Biophysical Research Communications, 2011, 412(4): 757-762. doi: 10.1016/j.bbrc.2011.08.053
    张计育, 王刚, 黄胜男, 等. 乙醇脱氢酶基因家族在植物抵抗非生物胁迫过程中的作用研究进展[J]. 中国农学通报, 2015, 31(10): 246-250

    Zhang JY, Wang G, Huang SN, et al. Research progress on the role of alcohol dehydrogenase gene family in plant resistance to abiotic stress[J]. Chinese Agricultural Science Bulletin, 2015, 31(10): 246-250.
    张乐, 陈宣钦, 李昆志. 植物醛脱氢酶基因家族[J]. 生命的化学, 2013, 33(3): 299-306

    Zhang L, Chen XQ, Li KZ. Aldehyde dehydrogenase gene family in plants[J]. Chemistry of Life, 2013, 33(3): 299-306.
    Zhang W, Yu H, Lv Y, et al. Gene family expansion of pinewood nematode to detoxify its host defence chemicals [J]. Molecular Ecology, 2020, 29(5): 940-955. doi: 10.1111/mec.15378
    Zhao J, Wang AC, Wang Q. Genome-wide identification of the ABC gene family and its expression in response to the wood degradation of poplar in Trametes gibbosa [J]. Journal of Fungi, 2024, 10(2): 96. doi: 10.3390/jof10020096
    Zhou Q, Yu L, Ying SH, et al. Comparative roles of three adhesin genes (adh1-3) in insect-pathogenic lifecycle of Beauveria bassiana [J]. Applied Microbiology and Biotechnology, 2021, 105(13): 5491-5502. doi: 10.1007/s00253-021-11420-w
WeChat 点击查看大图
图(6)  /  表(3)
出版历程
  • 收稿日期:  2024-09-29
  • 修回日期:  2025-01-17
  • 接受日期:  2025-01-20

目录

    /

    返回文章
    返回